Experiencia Metodológica
– Manejo y mantenimiento de diversas líneas celulares (Balb/c 3T3, 3T3, Morat, HeLa, HepG2, MCF-7, MDA-MB-231, 4T1, 293T, Vero)
– Determinación de citotoxicidad y genotoxicidad mediante electroforesis unicelular (ensayo cometa)
– Uso de metodologías bioquímicas para la determinación de especies reactivas de oxígeno
– Manejo de sistema de transformación celular de dos pasos
– Generación de Xenotrasplante de células tumorales mamarias en ratones
– Extracción y purificación de ácidos nucleicos (DNA, RNA y oligonucleótidos) 2
– Diseño de oligonucleótidos (primers, siRNA y shRNA) y construcción de plásmidos para transfecciones bacterianas
– Manejo y transformación de bacterias
– Transfecciones celulares con siRNAs, shRNAs y partículas lentivirales
– Extracción, cuantificación y análisis de proteínas por medio de western blot (SDS-PAGE)
– RT-PCR (reverse transcription polymerase chain reaction)
– Análisis de proteínas por inmunofluorescencia e inmunocitoquímica
– Uso de microscopia para análisis de muestras (Microscopia de luz: con microscopio Axiostar Plus, Zeiss; Microscopia de fluorescencia: con microscopio Olympus BX-60; microscopia de barrido: con microscopio Jeol ARM200F; microscopio invertido IX73)
– Tinción tricrómica de Mason
– Extracción, cuantificación y análisis de vesículas extracelulares
– Técnica de isoelectroenfoque y 2D SDS-PAGE
– Extracción de proteínas de geles para análisis por espectrometría de masas
– Zimogramas
– Ensayos de migración por cierre de herida
– Ensayos de invasión en cámara de Boyden
